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考馬斯亮藍法測定蛋白質(zhì)濃度的原理、步驟及注意事項
關(guān)鍵詞:紫外分光光度計;蛋白質(zhì)濃度;美析儀器; UV-1100;UV-1200
蛋白質(zhì)濃度測定的方法有很多,考馬斯亮藍測定蛋白質(zhì)是實驗室zui常見的一種方式,它利用比色法和色素法混合方法、操作簡便,下文介紹了考馬斯亮藍測定蛋白質(zhì)濃度的原理、優(yōu)缺點、操作以及注意事項。
實驗原理
考馬斯亮藍(Coomassie Brilliant Blue)法測定蛋白質(zhì)濃度,是利用蛋白質(zhì)―染料結(jié)合的原理,定量的測定微量蛋白濃度的快速、靈敏的方法。這種蛋白質(zhì)測定法具有超過其他幾種方法的突出優(yōu)點,因而正在得到廣泛的應用。這一方法是目前靈敏度zui高的蛋白質(zhì)測定法。
考馬斯亮蘭G-250染料,在酸性溶液中與蛋白質(zhì)結(jié)合,使染料的zui大吸收峰(lmax)的位置,由465nm變?yōu)?595nm,溶液的顏色也由棕黑色變?yōu)樘m色。通過測定595nm處光吸收的增加量可知與其結(jié)合蛋白質(zhì)的量。研究發(fā)現(xiàn),染料主要是與蛋白質(zhì)中的堿性氨基酸(特別是精氨酸)和芳香族氨基酸殘基相結(jié)合。
考馬斯亮藍染色法的突出優(yōu)點是:
(1)靈敏度高,據(jù)估計比Lowry法約高四倍,其zui低蛋白質(zhì)檢測量可達1mg。這是因為蛋白質(zhì)與染料結(jié)合后產(chǎn)生的顏色變化很大,蛋白質(zhì)-染料復合物有更高的消光系數(shù),因而光吸收值隨蛋白質(zhì)濃度的變化比Lowry法要大的多。
(2)測定快速、簡便,只需加一種試劑。完成一個樣品的測定,只需要5分鐘左右。由于染料與蛋白質(zhì)結(jié)合的過程,大約只要2分鐘即可完成,其顏色可以在1小時內(nèi)保持穩(wěn)定,且在5分鐘至20分鐘之間,顏色的穩(wěn)定性。因而*不用像Lowry法那樣費時和嚴格地控制時間。
(3)干擾物質(zhì)少。如干擾Lowry法的K+、Na+、Mg2+離子、Tris緩沖液、糖和蔗糖、甘油、巰基乙醇、EDTA等均不干擾此測定法。
此法的缺點是:
(1)由于各種蛋白質(zhì)中的精氨酸和芳香族氨基酸的含量不同,因此考馬斯亮藍染色法用于不同蛋白質(zhì)測定時有較大的偏差,在制作標準曲線時通常選用g—球蛋白為標準蛋白質(zhì),以減少這方面的偏差。
(2)仍有一些物質(zhì)干擾此法的測定,主要的干擾物質(zhì)有:去污劑、 Triton X-100、十二烷基硫酸鈉(SDS)等。
試劑與器材
一、試劑
考馬斯亮藍試劑:
考馬斯亮藍G―250 100mg溶于50mL 95%乙醇中,加入100mL 85%磷酸,用蒸餾水稀釋至1000mL。
二、標準和待測蛋白質(zhì)溶液
1.標準蛋白質(zhì)溶液
結(jié)晶牛血清蛋白,預先經(jīng)微量凱氏定氮法測定蛋白氮含量,根據(jù)其純度用0.15mol/L NaCl配制成1mg/mL蛋白溶液。
2.待測蛋白質(zhì)溶液。
人血清,使用前用0.15mol/L NaCl稀釋200倍。
三、器材
試管1.5×15cm(×6),試管架,移液管管0.5mL(×2);1mL(×2);5mL(×1);恒溫水浴;分光光度計,美析UV-1100;UV-1200。
操作方法
一、制作標準曲線
取7支試管,按下表平行操作。
試管編號 0 1 2 3 4 5 6
標準蛋白溶液(mL) 0 0.01 0.02 0.03 0.04 0.05 0.06
0.1 0.09 0.08 0.07 0.06 0.05 0.04
考馬斯亮藍試劑(mL) 5mL
搖勻,1h內(nèi)以0號管為空白對照,在595nm處比色
A595nm
繪制標準曲線:以A595nm為縱坐標,標準蛋白含量為橫坐標,在坐標紙上繪制標準曲線。
二、未知樣品蛋白質(zhì)濃度測定
測定方法同上,取合適的未知樣品體積,使其測定值在標準曲線的直線范圍內(nèi)。根據(jù)所測定的A595nm值,在標準曲線上查出其相當于標準蛋白的量,從而計算出未知樣品的蛋白質(zhì)濃度(mg/mL)。
注意事項
在試劑加入后的5-20min內(nèi)測定光吸收,因為在這段時間內(nèi)顏色是zui穩(wěn)定的。
測定中,蛋白-染料復合物會有少部分吸附于比色杯壁上,測定完后可用乙醇將藍色的比色杯洗干凈。
利用考馬斯亮藍法分析蛋白必須要掌握好分光光度計的正確使用,重復測定吸光度時,比色杯一定要沖洗干凈,制作蛋白標準曲線的時候,蛋白標準品是從低濃度到高濃度測定,防止誤差。
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